1. 样品称量与取样

将待测农产品样品进行粉碎/剪碎，使样品尽可能均匀。称取约 1 g 样品，转移至农残萃取管中。

分析：称量的目的不是简单控制样品质量，而是为后续计算农药残留浓度提供准确的样品基准。样品粉碎越充分，目标农药从植物组织中释放和进入萃取液的效率通常越高，同时也有利于提高样品的均一性。

2. 加入乙腈进行萃取

向装有样品的萃取管中加入约 3 mL 乙腈。随后立即进行振摇，使样品与乙腈充分接触。

分析：这是整个前处理的核心——溶剂萃取。乙腈具有较好的农药萃取能力，可以把样品组织中的多种农药从固体基质转移到液相中。

3. 振摇，使萃取充分

加入乙腈后，对萃取管进行快速振摇/混匀。

分析：振摇能够增加样品与萃取溶剂之间的接触面积，加快农药从植物组织向乙腈中的扩散。

4. 静置/分层后取上层萃取液

从萃取管中吸取上层清液，取约 1 mL 上层清液，转移至后续净化管中。

分析：这一步实际上是在进行初步的固液分离。

5. 转移至净化管

将约 1 mL 上层萃取液加入净化管。

分析：萃取并不意味着样品已经可以直接进入仪器检测。植物样品中除了农药，还有大量：色素、脂类、蛋白质、有机酸、糖类植物组织中的其他共提取物这些物质可能产生严重的基质效应。所以需要通过净化进一步降低基质干扰，提高目标农药检测的准确性和仪器稳定性。

6. 振摇净化

对净化管进行约 30 s 振摇。

分析：这一阶段不是单纯的“混匀”，而是让萃取液与净化材料充分接触。

7. 离心分离

将净化管放入离心机。

分析：离心的作用是利用离心力加速固体颗粒、吸附剂等与液相的分离。

8. 取净化后的样液

离心完成后，视频重新取出处理后的样品管，并用移液器吸取处理后的液体。

分析：这一阶段得到的已经不是最初的粗萃取液，而是经过：样品粉碎 → 乙腈萃取 → 固液分离 → 净化 → 离心得到的相对洁净样液。这一步对后续检测尤其重要，因为进入仪器的样液洁净程度会直接影响色谱系统和检测器。

9. 进样前处理：加入增强/辅助试剂

“进样”“加入增强试剂B”可以看到操作人员使用移液器向样液中加入试剂。

分析：这说明该实验体系在正式检测前还有一个检测体系适配/增强步骤。增强试剂可能用于改善目标物的检测响应、显色反应或与后续检测体系发生反应。

10. 转移至检测池/检测装置

最后，将处理后的样液加入检测池，并将检测池放入仪器中进行检测。